mars 22, 2021

Composé d’administration IV

Intracardiaca, rétro orbital et le bandolero sont certaines des méthodes d’injection spécialisées que les chercheurs biomédicaux utilisent pour des expériences nécessitant une livraison de composés par ces itinéraires anormaux.

Une injection intracardiaca fournit le composé dans le ventricule gauche permettant directement à la substance une circulation artérielle directement. La route orbitale rétro est une alternative à l’injection dans la veine de la file d’attente et est utilisée pour délivrer le composé dans la circulation veineuse. Et il consiste en une injection de tampon sous-cutané de l’article sur les pattes postérieures de l’animal. Cette vidéo indique les considérations, des procédures et des applications de ces techniques d’injection spéciales.

Commençons par des antécédents et des choses que l’on devrait envisager avant de commencer ces procédures d’administration.

L’administration intracardiaca est adoptée en utilisant une échographie pour guider l’aiguille au bon endroit du cœur. Toutefois, si cela est fait correctement, en utilisant les endroits appropriés, l’administration peut être effectuée sans l’utilisation d’ultrasons. Notez que la procédure nécessite l’utilisation de l’anesthésie générale et seule une injection d’animaux est autorisée pour les procédures de survie. Généralement, une aiguille de jauge de 27-30 est utilisée pour cette injection et ce volume d’administration maximum est de 100 à 300 microlitres pour les souris et les rats, respectivement.

pour injection intraveineuse orbitale rétro, il faut avoir une compréhension juste de la structure orbitale veineuse. Une souris a une poitrine où plusieurs veines – à connaître, le supraorbital, la surface dorsale nasale, la surface inférieure et temporaire temporaire. Pendant que chez le rats, il y a un réseau ou un plexus de plusieurs veines. L’injection est faite directement dans la poitrine ou le plexus. En tant que IntraCardiaCO, cette procédure nécessite également l’utilisation de l’anesthésie générale et seule une injection oculaire par jour est recommandée au total deux injections oculaires pour les procédures de survie. Comme pour toutes les injections, l’aiguille la plus petite taille doit être sélectionnée – généralement 27-30- et le volume maximal recommandé est de 150 μL par œil.

malgré la controverse, l’utilisation de l’injection de Bandolero reste nécessaire pour certaines études , généralement liée à l’inflammation et à la tumeur de croissance. Notez que les injections ne peuvent être effectuées que dans un seul pied, jamais bi-latéralement. Et les mesures du bandit doivent être effectuées quotidiennement, dès que l’inflammation évidente s’est produite.

Apprenez maintenant les procédures d’injection, de l’injection intracardiaca. Nous vous montrerons la procédure d’une souris, mais les points de référence et le protocole d’un rat sont similaires.

La première étape consiste à préparer la seringue. Se souvenir d’un mètre d’aiguille et d’une seringue 1 cc convient aux souris. Et le volume maximum d’injection intracardiaque 100 microlitres. Développement de la solution, laissez une petite quantité d’air entre le piston et le matériau d’injection. Ceci est pour permettre au sang d’entrer dans la seringue, il est placé dans le cœur.

Pour commencer, anesthésiez l’animal à l’aide d’anesthésiques inhalants ou injectables. Examen des considérations pour la maintenance de l’anesthésie générale dans une autre vidéo de cette collection. Ensuite, position de la dorsale de récupération des animaux sur une plate-forme isolée. Ensuite, les membres avant la plate-forme de ruban et placent un morceau de bande horizontalement sur l’abdomen au-dessus des hanches. Cela est encore plus constant de l’animal et évitez tout mouvement une fois que l’aiguille a été insérée. Ensuite, en utilisant une balançoire de poitrine humide de l’animal avec 70% d’alcool.

Pour localiser le site d’injection, localisez d’abord les XiFoides et Sternum Manubrio. Ensuite, trouvez le point milieu entre les deux signes. 1-2 mm à gauche de ce point est le signal d’insertion de l’aiguille. Avec un applicateur de pointe de coton, appliquez la povidone iodine pour marquer le site d’insertion de l’aiguille.

à injecter, diriger l’aiguille perpendiculaire à la table et insérer la profondeur d’environ 2 mm. Ensuite, appliquez une très petite pression de dos au piston. Un sang de oxygène rouge vif doit entrer au centre de la seringue, ce qui confirme le placement correct. Tenez la seringue au même endroit et injecter le matériau lentement et constamment sur le déroulement de 30 à 60 secondes. L’injection rapide peut provoquer une agglutination des cellules et l’obstruction des artères, un choc du système due à la température de la substance étant significativement inférieure à la température du corps, ou une expansion du ventricule et l’interruption de la fréquence cardiaque .

Une fois que le matériau a disparu la seringue, enlevez lentement et soigneusement l’aiguille sans aucun mouvement latéral peut déjà endommager les muscles du cœur. Puis relâchez le ruban des jambes avant et de l’abdomen et placez l’animal dans une position Prona dans une cage propre avec une literie suffisamment longue pour agir comme une couche isolante. Notez que la moitié de cette cage de récupération est dans l’animal anesthésié et une source de chaleur est située sur le côté chaud de la cage. Cela évite l’hypothermie, et tandis que l’animal récupère de l’anesthésie sera capable de se déplacer du côté chaud comme souhaité.

Ensuite, nous apprendrons la méthode d’injection intraveineuse à l’aide du plexus orbital rétro chez les rats Encore une fois, nous vous montrerons la procédure d’une souris, mais les points de référence et le protocole de rats sont similaires.

Connectez l’aiguille appropriée dans la seringue sélectionnée et remplissez le matériau d’injection. N’oubliez pas qu’une aiguille de calibre 27-30 serait généralement utilisée avec le plus petit de la seringue et un volume maximum de 150 microlitres.

Pour démarrer le processus, d’abord anesthésize l’animal. Ensuite, placez-le sur une surface plane en position de récupération latérale. Maintenant, placez l’index en haut de la tête et du pouce sur la mâchoire et tirez doucement vers le dos. Ceci est de serrer la peau et de se démarquer du globe oculaire. Veillez à ne pas appliquer de pression sur la trachée et restreindre le flux d’air. Si plusieurs injections, appliquez une anesthésique ophtalmique topique, telle que la tétracaïne ou la proparacaïne.

Insérez l’aiguille dans l’angle médial de l’œil avec un angle de 45 ° pour le nez. La profondeur doit être suffisante pour pénétrer dans les tissus conjonctival et avancer dans l’orbite oculaire et dans la poitrine. Vous ne devriez pas trouver l’os à l’arrière de l’orbite. Pour éviter la rupture des vaisseaux sanguins, assurez-vous que l’aiguille a un mouvement minimal une fois inséré. Ne pas aspirer et réduire les navires. Injecter l’article lentement et régulièrement. Ensuite, retirez doucement l’aiguille et appliquez une pression légère dans les yeux pour contrôler la saignement et fournir une hémostase.

Enfin, nous vérifierons la méthode d’injection de bandage chez les souris et les rats. Pour commencer, placez l’aiguille appropriée et remplissez la seringue avec le bon volume. Cette procédure peut être faite sur des animaux conscients.

Placez l’animal dans un tube de fixation avec un hindé isolé et étendu debout en tenant la peau au-dessus du genou. Nettoyez vos pieds avec de l’eau ou de l’alcool pour éliminer les débris avant d’injecter. Pour éviter le vaisseau sanguin qui fonctionne le long du pied, le signal d’injection est au centre, mais juste à l’extérieur de la ligne médiane, plus près des orteils.

Placez la lunette de l’aiguille sur le site d’injection, le diriger vers le talon. Injectez l’élément lent et constamment pour éviter la distension rapide des tissus de pied. Cela fera gonfler le bandit à mesure que le matériel d’injection remplit cet espace sous-cutané. Au pied d’un petit animal, le gonflement de l’injection peut s’étendre au talon, tandis que dans un animal plus grand, il sera plus localisé.

Après injection, observe les animaux quotidiennement et si le gonflement persistant est présent ou si Il en résulte des blessures ou des tumeurs, le protocole expérimental, puis l’utilisation d’une pince, effectuez la mesure du bandage. Cet instrument mesure l’épaisseur du pied en millimètres et aide à la quantification de l’inflammation.

Discutons maintenant des exemples d’expériences à l’aide d’injections intracardiacques, de rétro orbital et de bandit.

A de la De nombreuses applications d’administration intracardiaca, c’est le développement d’un modèle animal de métastase cancer. Ici, les chercheurs ont utilisé cet itinéraire pour injecter des cellules tumorales qui ont une propension à la colonisation des os. Dans les jours suivants, il a étudié la croissance de la tumeur dans les os par des rayons X et de la fluorescence, des techniques d’imagerie. Dans une autre étude, la route orbitale rétro a été utilisée pour injecter des anticorps spécifiques que l’étiquette de neutrophiles. Ensuite, avec l’aide de la projection d’image intravitale, les scientifiques ont pu suivre le schéma de migration de cellules marquées.

Enfin, les chercheurs utilisent généralement une injection de bandit pour analyser la réponse inflammatoire. Dans cette expérience, des chercheurs isolés de cellules mononucléées des échantillons de sang périphériques de sang humain, mélangent avec différents antigènes et injecteront les solutions dans la bellerie des animaux.

Vous n’avez vu que la dernière section de Zeus dans les techniques d’administration Composés communs et spécialisés.

Juste pour récapituler, dans la première partie, nous examinons la voie parentérale la plus courante.Dans le deuxième chapitre, nous parlons des procédures d’entérales et de sujets. Le troisième acompte aborde le premier ensemble de procédures anormales telles que intradermiques, intranasques et intracrâniennes chez les néonates. Enfin, nous avons examiné ici trois liaisons supplémentaires que les chercheurs biomédicaux dans les laboratoires à des fins spécifiques.

Après avoir vu cette série, vous avez une bien meilleure compréhension de différentes techniques d’administration et que vous devriez également connaître les considérations générales et spécifiques liées à ces protocoles d’administration composites comme toujours, merci de voir!

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