març 22, 2021

Compost d’administració IV

intracardíaca, retro orbital i el bandoler són alguns dels mètodes d’injecció especialitzada que investigadors biomèdics utilitzen per a experiments que requereix lliurament de compostos a través d’aquestes rutes anormals.

Una injecció intracardíaca proporciona el compost en el ventricle esquerre permetent que la substància entrar directament en la circulació arterial. La ruta orbital retards és una alternativa a la injecció a la vena de la cua i s’utilitza per lliurar el compost en la circulació venosa. I consisteix en una injecció de coixinet subcutània de l’article en les potes del darrere de l’animal. Aquest vídeo mostren les consideracions, procediments i aplicacions d’aquestes tècniques d’injecció especials.

Anem a començar amb alguns antecedents i coses que un ha de considerar abans d’iniciar aquests procediments d’administració.

Administració intracardíaca es realitza mitjançant l’ús d’un ultrasò per guiar l’agulla en el lloc correcte en el cor. No obstant això, si es realitza correctament, utilitzant els llocs adequats, l’administració pot realitzar-se sense l’ús de l’ecografia. Nota que el procediment requereix l’ús d’anestèsia general i només una injecció per animal està permès per a procediments de supervivència. Generalment s’utilitza una agulla de calibre 27-30 per a aquesta injecció i volum màxim d’administració és 100 a 300 microlitres per a ratolins i rates, respectivament.

Per injecció intravenosa via retro orbital, un ha de tenir una justa comprensió de l’estructura venosa orbital. Un ratolí té un si on diverses venes-a saber, la supraorbitària, dorsal nasal, inferior palpebral i superficial temporal-convergeixen. Mentre que a les rates, hi ha una xarxa o plexe de diverses venes. La injecció es realitza directament en el si o al plexe. Com intracardíac, que aquest procediment també requereix l’ús d’anestèsia general i només una injecció per ull a el dia es recomana un total de dues injeccions per ull per als procediments de supervivència. Com amb totes les injeccions, l’agulla de mida més petita ha de ser seleccionat-generalment calibre 27-30- i el volum màxim recomanat és de 150 ml per ull.

Tot i la controvèrsia, l’ús de la injecció de bandoler segueix sent necessari per a alguns estudis, generalment relacionades amb inflamació i tumor creixement. Recordeu que les injeccions només podrà realitzar-se en un sol peu, mai bi-lateralment. I els mesuraments de bandoler s’han de fer diàriament, tan aviat com s’ha produït inflamació evident.

Ara anem a aprendre els procediments d’injecció, a partir de la injecció intracardíaca. Mostrarem el procediment en un ratolí, però els punts de referència i el protocol per a una rata són similars.

El primer pas és preparar la xeringa. Recordar un 29 mesurador d’agulla i xeringa d’1 cc és apropiat per als ratolins. I el volum màxim d’injecció intracardíaca 100 microlitres. Elaboració de la solució, deixar una petita quantitat d’aire entre l’èmbol i el material d’injecció. Això és per permetre sang entrar a la xeringa, es col·loca al cor.

Per començar, anestesiar l’animal utilitzant anestèsics inhalants o injectables. Revisió de les consideracions per al manteniment d’anestèsia general en un altre vídeo d’aquesta col·lecció. A continuació, posició de l’animal recumbency dorsal en una plataforma aïllada. Després, els membres anteriors a la plataforma de la cinta i poseu un tros de cinta horitzontalment a l’abdomen per sobre dels malucs. Això és encara més constant de l’animal i evitar qualsevol moviment un cop que s’ha inserit l’agulla. A continuació, usant un hisop mullat pit de l’animal amb alcohol a l’70%.

Per localitzar el lloc d’injecció, primer Localitzeu el xifoide i l’estèrnum manubri. A continuació, trobar el punt mig entre les dues senyals. 1-2 mm esquerra d’aquest punt, és el senyal d’inserció de l’agulla. Amb un aplicador amb punta de cotó, aplicar povidona iodada per marcar el lloc d’inserció de l’agulla.

Per a injectar, dirigir l’agulla perpendicular a la taula i inseriu a la profunditat d’uns 2 mm. Després, aplicar una molt petita contrapressió a l’èmbol. Un brillant vermell sang oxigenada haurà d’entrar al centre de la xeringa, que confirma la col·locació correcta. Sostingui la xeringa en el mateix lloc i injectar el material lentament i constantment en el transcurs de 30 a 60 segons. Injecció ràpida pot ocasionar aglutinació de les cèl·lules i l’obstrucció de les artèries, un xoc a sistema causa de la temperatura de la substància sent significativament menor que la temperatura de el cos, o una expansió de l’ventricle i la interrupció de l’ritme cardíac.

Una vegada que el material hagi desaparegut la xeringa, lentament i amb cura retiri l’agulla sense cap moviment lateral ja pot danyar els músculs de el cor. Després deixeu anar la cinta de la potes davanteres i l’abdomen i col·locar l’animal en posició prona en una gàbia neta amb roba de llit prou profunda per actuar com una capa aïllant. Nota que la meitat d’aquesta gàbia de recuperació està en l’animal anestesiat i una font de calor és al costat calent de la gàbia. Això evita la hipotèrmia, i mentre l’animal es recupera de l’anestèsia serà capaç de moure de la banda calenta com es desitgi.

A continuació, anem a aprendre el mètode de la injecció intravenosa utilitzant el plexe retro orbital en rates. Una altra vegada, li mostrarem el procediment en un ratolí, però els punts de referència i el protocol per a les rates són similars.

Connecteu l’agulla adequada a la xeringa seleccionada i omplir en el material d’injecció. Recordeu que generalment s’utilitzaria una agulla de calibre 27-30 amb el possible més petit de la xeringa i un volum màxim de 150 microlitres.

Per iniciar el procés, primer anestesiar l’animal. Després, col·loqui-la sobre una superfície plana en posició lateral recumbency. Ara poseu el dit índex a la part superior del cap i el polze a la mandíbula i suaument tiri cap enrere i avall. Això és per tensar la pell i sobresurten de l’globus ocular. Aneu amb compte de no aplicar pressió sobre la tràquea i restringir el flux d’aire. Si múltiples injeccions, aplicar anestèsic oftàlmic tòpic, com la tetracaína o proparacaine.

Inseriu l’agulla en l’angle medial de l’ull amb un angle de 45 ° per al nas. La profunditat ha de ser suficient per a penetrar els teixits conjuntivals i avançar en l’òrbita ocular i en el si. No hauria de trobar l’os a la part posterior de l’òrbita. Per evitar la ruptura dels vasos sanguinis, segur de l’agulla té un mínim moviment un cop inserit. No aspirar, ja col·lapsen els gots. Injectar l’article de manera lenta i constant. Després, retiri suaument l’agulla i aplicar pressió lleugera als ulls per controlar el sagnat i per proporcionar hemostàsia.

Finalment, anem a revisar el mètode d’injecció de bandoler en ratolins i rates. Per començar, poseu l’agulla apropiada i omplir la xeringa amb el volum correcte. Aquest procediment pot fer-se en animals conscients.

Lloc l’animal en un tub de subjecció amb un hind peu aïllat i estesos subjectant la pell per sobre del genoll. Netejar els peus amb aigua o amb alcohol per eliminar les deixalles abans d’injectar. Per evitar el vas sanguini que corre al llarg de el peu, el senyal d’injecció està al centre, però just fora de la línia mitjana, més a prop als dits de peu.

Col·loqui el bisell de la agulla cap amunt en el lloc d’injecció, dirigint cap al taló. Injectar l’article lenta i constantment per evitar la ràpida distensió dels teixits de el peu. Això farà que el bandoler a inflar a mesura que el material d’injecció plena aquest espai subcutani. A peu d’un petit animal la inflor de la injecció pot estendre a l’taló, mentre que en un animal més gran serà ser més localitzat.

Després de la injecció, observar els animals diàriament i si inflor persistent està present o si hi ha lesions o tumors com a resultat el protocol experimental, llavors, utilitzant una pinça, realitzar el mesurament de bandoler. Aquest instrument mesura el gruix de el peu en mil·límetres i ajuda en la quantificació de la inflamació.

Ara anem a discutir alguns experiments d’exemple utilitzant injeccions intracardíaques, retardar orbital i bandoler.

Una de les moltes aplicacions d’administració intracardíaca és desenvolupament d’un model animal de metàstasi de càncer. Aquí, els investigadors van utilitzar aquesta ruta per injectar les cèl·lules tumorals que tenen propensió a la colonització d’os. En els dies següents, va estudiar el creixement de l’tumor en els ossos mitjançant raigs X i fluorescència, tècniques d’imatge. En un altre estudi, es va utilitzar la ruta orbital retards per injectar els anticossos específics que etiqueta de neutròfils. Després, amb ajuda de la projecció d’imatge intravital, els científics van ser capaços de rastrejar el patró de migració de les cèl·lules marcades.

Finalment, els investigadors solen utilitzen injecció de bandoler per analitzar la resposta inflamatòria. En aquest experiment, els investigadors van aïllar cèl·lules mononuclears de sang perifèrica de mostres de sang humana, barregen amb diferents antígens i injectaran les solucions en bandoler de l’animal.

Només ha vist el tram final de Zeus en les tècniques de administració compostos habituals i especialitzats.

Només per recapitular, a la primera part repassem la ruta parenteral més comú.En el segon capítol , parlem dels procediments de enterals i tòpics. El tercer lliurament aborda el primer conjunt de procediments anormals com intradèrmica , intranasal i intracranial en nounats . Finalment, aquí discutim tres rutes addicionals que investigadors biomèdics en els laboratoris per a fins específics.

Després de veure aquesta sèrie tens un molt millor comprensió de les tècniques d’administració diferent i també ha de saber les consideracions generals i específiques relacionades amb aquests protocols d’administració compost com sempre , gràcies per veure !

Deixa un comentari

L'adreça electrònica no es publicarà. Els camps necessaris estan marcats amb *